Potencjalne możliwości wykorzystania berberyny w przeciwdziałaniu insulinooporności i w cukrzycy typu 2
, e
29 nov 2021
INFORMAZIONI SU QUESTO ARTICOLO
Categoria dell'articolo: Review
Pubblicato online: 29 nov 2021
Pagine: 790 - 801
Ricevuto: 30 ott 2020
Accettato: 14 lug 2021
DOI: https://doi.org/10.2478/ahem-2021-0038
Parole chiave
© 2021 Mróz et al., published by Sciendo
This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
Wyniki wybranych badań klinicznych przedstawiające potencjalne działanie berberyny przeciwko cukrzycy i innym chorobom metabolicznym
Autor | Rok | Badana grupa | Liczba pacjentów oraz dawka substancji | Czas leczenia | Efekt (p<0,05) | Piśmiennictwo |
---|---|---|---|---|---|---|
Yang i wsp. | 2012 | Pacjenci z MS | BBR; 0,3 g 3x/d (n=37) | 3 miesiące | ↓ BMI | [ |
↓ obwodu talii | ||||||
↓ TG | ||||||
↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | ||||||
↓ HOMA-IR | ||||||
↓ HbA1c | ||||||
↓ leptyny | ||||||
↓ wskaźnika leptyna/adiponektyna | ||||||
Perez-Rubio i wsp. | 2013 | Pacjenci z MS | BBR 0,5 g 3x/d (n=12) | 3 miesiące | ↓ BMI | [ |
↓ obwodu talii | ||||||
placebo (n=12) | ↓ stężenia glukozy na czczo | |||||
↓ AUC glukozy | ||||||
↓ AUC insuliny | ||||||
↓ insulinogenic index | ||||||
↑ wskaźnika Matsudy | ||||||
Chen i wsp. | 2016 | Pacjenci z T2D | BBR: 0,3 g/3x/d (n=30) | 8 tygodni | ↓ BMI | [ |
↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | ||||||
↓ HbA1c | ||||||
↓ ekspresji TNF-α, CRP i LPS, | ||||||
↑ |
||||||
Memon i wsp. | 2018 | Pacjenci z T2D | BBR; 0,5 g 3x/d (n=100) | 3 miesiące | ↓ masy ciała | [ |
↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | ||||||
MET; 0,5 g 3x/d (n=100) | ↓ HbA1c | |||||
↓ HOMA-IR | ||||||
↓ stężenia metyloglioksalu | ||||||
Sheng i Xie | 2010 | Pacjenci z T2D | BBR: 0,5 g 3x/d + MET: 0,5 g 3x/d + | 3 | ↓ stężenia glukozy na czczo | [ |
glipizyd: 5 mg 2x/d (n=30) | miesiące | ↓ HOMA-IR | ||||
↓ TNF-α | ||||||
MET: 0,5 g 3x/d + glipizyd: 5 mg 2x/d | ↓ IL-6 | |||||
(n=30) | ↓ CRP | |||||
Zhang i wsp. | 2010 | Pacjenci z T2D | BBR: 0,5 g/2x/d (n=50) | 2 miesiące | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [ |
↓ HbA1c | ||||||
MET: 0,75 g/2x/d (n=26) | ||||||
Rozyglitazon: 4 mg/d (n=21) | ||||||
Pacjenci z T2D/ IFG | ||||||
i WZWB/WZWC | BBR: 1g/d (n=35) | ↓ stężenia glukozy na czczo | ||||
Cao i Su | 2019 | Pacjenci z MS | BBR 4 tabl. 3x/d (n=40) | 1 | ↓ stężenia glukozy na czczo | [ |
miesiąc | ↓ poposiłkowego stężenia glukozy | |||||
Tradycyjna farmakoterapia MS (n=40) | ↓ HOMA-IR | |||||
↓ hs-CRP | ||||||
↓ IL-6 | ||||||
↓ TNF-α | ||||||
Shidfar i wsp. | 2012 | Pacjenci z T2D | Ekstrakt z owoców |
3 | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [ |
miesiące | ↓ HOMA-IR | |||||
Placebo – laktoza (n=21) | ||||||
Di Pierro i wsp. | 2012 | Pacjenci z T2D | Berberol® ( |
6 | ↓ HbA1c | [ |
indyjski – 0,5 g BBR oraz |
miesięcy | ↓ stężenia insuliny na czczo | ||||
↓ HOMA-IR | ||||||
(n=22) | ||||||
Derosa i wsp. | 2013 | Pacjenci z nadwagą | Berberol® 2x/d | 3 | ↓ stężenia insuliny na czczo | [ |
i dyslipidemią o nis- | miesiące | ↓ HOMA-IR | ||||
kim ryzyku sercowo- | Placebo | ↓ stężenia rezystyny i RBP-4 | ||||
naczyniowym | ↑ stężenia adiponektyny | |||||
Di Pierro i wsp. | 2015 | Pacjenci z T2D i | Berberol® 2x/d (n=15) | 12 | ↓ stężenia glukozy na czczo | [ |
hipercholesterolemią | miesięcy | ↓ HbA1c | ||||
nietolerujący statyn | Berberol® + statyna 2x/d (n=15) | |||||
Berberol® + ezetymib 2x/d (n=15) | ||||||
Guarino i wsp. | 2017 | Pacjenci z MS | Berberol® 2x/d (n=68) | 52 ty-godnie | ↓ HOMA-IR | [ |
↓ obwodu talii | ||||||
Placebo 2x/d (n=68) | ↓ %TF | |||||
↓ %VF | ||||||
↓ HbA1c |
Wyniki wybranych badań in vitro przedstawiające potencjalne działanie berberyny przeciwko cukrzycy i innym chorobom metabolicznym
Autor | Rok | Rodzaj badanego materiału | Efekt BBR (p<0,05) | Piśmiennictwo |
---|---|---|---|---|
Yu i wsp. | 2010 | Ludzkie komórki NCI-H716 1 μM, 10 μM, i 100 μM BBR, 2h; 100 μM BBR, 24h | ↑ sekrecji GLP-1 ↑ ekspresji genu proglukagonu i PC3 | [ |
Zhang i wsp. | 2010 | CEM T-limfocyty, HCT-116 komórki raka okrężnicy, SW1990 komórki trzustki, HT1080 komórki włókniakomięsaka, 293T komórki fibro- blastów BBR (10 μg/mL), 12h | ↑ ekspresji InsR mRNA we wszystkich liniach komórkowych | [ |
Xing i wsp. | 2011 | Hepatocyty pochodzące od: Grupa kontrolna – zdrowe samce szczura Wistar (n=10) | ↓ zawartości TG w wątrobie ↓ stłuszczenia i stanu zapalnego w wątrobie | [ |
Szczury z NAFLD – BRR (187.5 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=10) | ↑ ekspresji IRS-2 mRNA | |||
Szczury z NAFLD – pioglitazon (10 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=10) | ||||
Szczury z NAFLD – sól fizjologiczna (3 ml/kg mc/d), 4 tygodnie (n=10) | ||||
Xia i wsp. | 2011 | Hepatocyty pochodzące od zdrowych samców szczura Sprague- Dawley i szczurów z DM indukowaną STZ na HFD; BBR = 380 mg/kg mc/d , 5 tygodni (n=6) | ↓ ekspresji białka FoXO1, SREBP1 i ChREBP | [ |
↓ ekspresji, PEPCK i G6P-azy | ||||
↓ FAS | ||||
↓ akumulacji lipidów w wątrobie | ||||
Abd El- Wahab i wsp. | 2013 | Homogenat wątroby pochodzący od myszy Balb/c (n=6) Ekstrakt etanolowy z korzeni |
↓ aktywności α-glukozydazy (przy czym hamowanie wywołane przez ekstrakt |
[ |
Boudjelthia i wsp. | 2017 | Metanolowy i wodny ekstrakt |
↓ aktywności α-amylazy (przy czym hamowanie wywołane przez metanolowy ekstrakt było ↑ niż przez ekstrakt wodny) | [ |
Chakrabarti i wsp. | 2011 | DPP-4 pochodząca ze świńskiej nerki Metanolowy ekstrakt z kory |
↓ aktywności DPP-4 | [ |
Jiang i wsp. | 2015 | Tkanki wątroby pochodzące od samców szczurów Wistar: | ↑ ekspresji białka LKB1, AMPK, p- AMPK i p-TORC2 | [ |
Grupa kontrolna – zdrowe szczury (n=8) | ↓ ekspresji białka PEPCK i G-6-P | |||
Szczury z DM indukowaną STZ (n=8) | ||||
Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (156 mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||
Szczury z DM indukowaną STZ + MET (184 mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||
Szczury z DM indukowaną STZ + AICAR (0.5 mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||
Furrianca i wsp. | 2017 | Ludzkie komórki wątroby HepG2 Ekstrakt z korzenia |
↑ wychwytu glukozy w komórkach HepG2 z i bez IR Aktywacja fosforylacji AMPK | [ |
BBR (0.25 x 10-3 μg/μL), 24h | ||||
MET (0.25 x 10-3 μg/μL), 24h | ||||
Xu i wsp. | 2014 | Ludzkie komórki raka wątroby HepG2 i mysi mioblast szkieletowy C2C12 | Hamowanie kompleksu I łańcucha oddechowego | [ |
BBR (5–40 μmol/L), 24h | ↓ syntezy ATP ↑ uwalnianie mleczanu i ↑ zużycia glukozy w sposób zależny od dawki | |||
MET (1–10 μmol/L), 24h | ↑ fosforylacji AMPK i syntazy acetylokoenzymowej | |||
Zhang i wsp. | 2018 | Pierwotne hepatocyty pochodzące od dorosłych myszy BBR (0, 5, 10 μM), 6-8 h | Hamowanie aktywności kompleksu I łańcucha oddechowego (dehydrogenazy NADH) | [ |
↑ AMP poprzez hamowanie deacetylazy SIRT-3 | ||||
↑ wychwyt glukozy związany z AMPK inhibicja cyklazy adenylowej | ||||
↓ poziomu cAMP i aktywności PKA degradacja enzymu PEPCK1 blokowanie indukowanej glukagonem wątrobowej glukoneogenezy | ||||
Liu i wsp. | 2018 | Hepatocyty, jelito cienkie | ↑ |
[ |
pochodzące od samców szczura Wistar | ||||
Grupa kontrolna: zdrowe szczury na NCD (n=10) | ↓ TLR4, TNF-α w wątrobie | |||
Otyłe szczury na HFD + BBR: 200 mg/kg mc/d, 8 tygodni (n=10) | ↑ InsR i IRS-1 mRNA w wątrobie | |||
Otyłe szczury na HFD + woda destylowana, 8 tygodni (n=10) | ||||
Zhong i wsp. | 2020 | Hepatocyty pochodzące od: | ↓ PEPCK, G6P-azy i PGC1α | [ |
Myszy ob/ob i myszy C57Bl/6J z DM indukowaną STZ | ↓ fosforylacji CREB u myszy ob/ob | |||
↓ podstawowej i indukowanej glu- | ||||
BBR (0-10 μM) | kagonem produkcji glukozy | |||
↓ cAMP i bromo-cAMP | ||||
↓ fosforylacji CREB stymulowanej forskoliną | ||||
Liu i wsp. | 2010 | Ludzkie komórki Caco-2 cells pochodzące od gruczolakoraka jelita grubego | ↓ aktywności disacharydaz (sacharazy i maltazy) | [ |
↓ ekspresji kompleksu sacharazaizomaltazy mRNA | ||||
BBR (2, 10, 50 μM), 5 dni | ||||
Akarboza (50 μM), 5 dni | ||||
Gong i wsp. | 2017 | Węzły chłonne/jelito cienkie pochodzące od: | ↓ liczby CD11b + CD68+ i % ↑ | [ |
Zdrowe szczury na normalnej diecie (0,5% karboksymetylocelulozy), | makrofagów w węzłach chłonnych | |||
9 tygodni (n=12) | krezkowych | |||
%↑ liczby limfocytów T regulato- | ||||
Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (0,5% kar- | rowych (Treg) w węzłach chłonnych | |||
boksymetylocelulozy), 9 tygodni (n=12) | krezkowych | |||
Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 375 | ↓ ekspresji IL-1β, MIF i TNF-α mRNA | |||
mg/kg mc/d), r-r BBR rozp. w wodzie zaw. 0,5% karboksymetyloce- | w jelicie | |||
lulozy, | ↑ ekspresji IL-4 i IL-10 mRNA w jelicie | |||
9 tygodni (n=12) | ↑ ekspresji tzw. białek „tight junction” | |||
(połączeń ścisłych) – OCLN i ZO-1 | ||||
Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 187,5 | w jelicie | |||
mg/kg mc/d), 9 tygodni (n=12) | ↓ ekspresji białka TLR4 i MyD88 | |||
↓ fosforylacji IKKβ (IKK2) | ||||
Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 93,75 | ↓ LBP i CD14 mRNA w jelicie | |||
mg/kg mc/d), 9 tygodni (n=12) | ||||
Samce szczura Wistar z DM indukowaną STZ na HFD (MET, 184 mg/ | ||||
kg mc/d), 9 tygodni (n=12) | ||||
Zhang i wsp. | 2011 | Mięśnie szkieletowe pochodzące od samców myszy KKay na HFD | ↑ ekspresji genu GLUT-4, MAPK8, | [ |
z DM: | MAPK14, PPAR |
|||
Grupa kontrolna – sól fizjologiczna (250 mg/kg mc/d), 4 tygodnie | ↓ ekspresji genu PPAR |
|||
(n=8) | CEBP, PGC i rezystyny | |||
Grupa z BBR (250 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=8) | ||||
Gomes i wsp. | 2012 | Mysi mioblast szkieletowy C2C12 | ↑ aktywności SDH, COX, ATPazy i syntazy cytrynianowej | [ |
BBR (różne parametry = różne dawki = różny czas ekspozycji na | ↑ włókien mięśniowych typu IIA | |||
BBR) | (glikolityczno-tlenowych) | |||
nieznaczne ↓ włókien mięśniowych | ||||
typu IIB (glikolitycznych) | ||||
↑ wskaźnika NAD+/NADH | ||||
Mi i wsp. | 2019 | Podwzgórze/przysadka/mięśnie szkieletowe pochodzące od samców | ↓ poziomu oreksyny-A, OX2R i CRH | [ |
szczura Sprague-Dawley: | w podwzgórzu | |||
↓ poziomu ACTH w przysadce | ||||
Zdrowe szczury na normalnej diecie, 4 tygodnie (n=9) | mózgowej | |||
↑ ekspresji GLUT4 mRNA w | ||||
Szczury z DM indukowaną STZ na HFD (0,5% karboksymetylocelu- | mięśniach szkieletowych | |||
lozy, 50 mg/kg mc/d), 4 tygodnie (n=12) | ||||
Szczury z DM indukowaną STZ na HFD (BBR, 200 mg/kg mc/d), 4 | ||||
tygodnie (n=12) | ||||
Szczury z DM indukowaną STZ na HFD (MET, 200 mg/kg mc/d), 4 | ||||
tygodnie (n=12) | ||||
Chen et al. | 2010 | Adipocyty 3T3-L1 i miocyty L6 pochodzące od myszy db/db | ↑ zdolności wychwytu glukozy przez | [ |
BBR (różne parametry = różne dawki = różny czas ekspozycji na | adipocyty 3T3-L1 i miocyty L6 | |||
BBR) | ↓ aktywności PTP1B w adipocytach | |||
3T3-L1 | ||||
↑ fosforylacji InsR, IRS1 i PKB w | ||||
adipocytach 3T3-L1 | ||||
Yang et al. | 2012 | Preadipocyty pochodzące z tkanki tłuszczowej sieciowej (kompo- | ↓ różnicowania preadipocytów | [ |
nenta trzewnej tkanki tłuszczowej) pacjentów z MS (n=9) | ↓ ekspresji PPARγ2, lipazy lipopro- | |||
BBR (0, 0.1, 1, 10 μM) | teinowej, C/EBPα, adiponektyny i | |||
leptyny mRNA | ||||
↓ sekrecji leptyny i adiponektyny pod- | ||||
czas różnicowania preadipocytów | ||||
Chang et al. | 2013 | Komórki kardiomiocytów H9c2 pochodzące od szczurów z i bez IR | ↑ podstawowego i stymulowanego | [ |
BBR (5–20 μM); 24 h | insuliną zużycia glukozy w komórkach | |||
H9c2 z IR | ||||
aktywacja AMPK | ||||
↑ wskaźnika p-AMPK/AMPK |
Wyniki wybranych badań in vivo przedstawiające potencjalne działanie berberyny przeciwko cukrzycy i innym chorobom metabolicznym
Autor | Rok | Badana grupa | Dawka substancji oraz liczba zwierząt | Czas leczenia | Efekt (p<0,05) | Piśmiennictwo |
---|---|---|---|---|---|---|
Yu i wsp. | 2010 | Zdrowe samce | Grupa kontrolna – placebo | 5 tygodni | ↓ stężenia glukozy na czczo | [ |
szczura Sprague–Dawley | ↓ pobierania pokarmu | |||||
BBR 60 mg/kg mc/d | ↑ wydzielania GLP-1 indukowane- | |||||
go obciążeniem glukozą | ||||||
BBR 120 mg/kg mc/d | ↑ ekspresję mRNA proglukagonu | |||||
w jelicie krętym w sposób zależny | ||||||
od dawki | ||||||
↑ proliferacji komórek L w jelicie | ||||||
Chen i wsp. | 2011 | Samce szczura Wistar | Szczury z DM indukowaną STZ; BBR 100 mg | 7 tygodni | ↓ stężenia glukozy na czczo i w | [ |
mc/kg/d chlorek berberyny rozp. w wodzie | OGTT | |||||
zaw. 0,5% karboksymetylocelulozy (n=7) | ↓ CRP | |||||
Hamowanie aktywności DPP-4 i | ||||||
Szczury z DM wywołaną STZ; 0,5% karboksy- | PTP-1B przez BBR | |||||
metylocelulozy (n=8) | ||||||
Grupa kontrolna – zdrowe szczury: 0,5% | ||||||
karboksy-metylocelulozy (n=10) | ||||||
Gomes i wsp. | 2012 | Samce szczura Sprague Dawley | Standardowa dieta, 12 tygodni | 4 tygodnie | ↓ masy ciała ogółem, FFM i FM | [ |
↓ stężenia insuliny na czczo | ||||||
HFD, 12 tygodni | ↓ stężenia leptyny | |||||
↑ stężenia adiponektyny | ||||||
HFD + BBR (100 mg/kg mc/d), 4 tygodnie | ↓ wskaźnika leptyna/adiponektyna | |||||
Zhang i wsp. | 2011 | Otyłe samce | Grupa kontrolna – sól fizjologiczna: 250 mg/ | 4 tygodnie | ↓ stężenia glukozy i insuliny na | [ |
myszy KKay z DM | kg mc/d (n=8) | czczo | ||||
na HFD | ↓ stężenia glukozy w OGTT | |||||
BBR: 250 mg/kg mc/d (n=8) | ↓ HOMA-IR | |||||
Jiang i wsp. | 2015 | Samce szczura Wistar | Grupa kontrolna – zdrowe szczury (n=8) | 12 tygodni | ↓ stężenia glukozy w OGTT | [ |
↓ stężenia insuliny na czczo | ||||||
Szczury z DM indukowaną STZ (n=8) | ↓ HOMA-IR | |||||
Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (156 | ||||||
mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||||
Szczury z DM indukowaną STZ + MET (184 | ||||||
mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||||
Szczury z DM indukowaną STZ + AICAR (0.5 | ||||||
mg/kg mc/d), 12 tygodni (n=8) | ||||||
Liu i wsp. | 2010 | Samce szczura Sprague Dawley | Szczury z DM indukowaną STZ – placebo, 5 | 5 tygodni | ↓ aktywności disacharydaz w | [ |
tygodni (n=6) | jelicie | |||||
↓ ekspresji kompleksu sacharaza- | ||||||
Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (100 | izomaltaza mRNA w jelicie | |||||
mg/kg mc/d), 5 tygodni (n=6) | ↓ przyjmowania pokarmu | |||||
↓ masy ciała | ||||||
Szczury z DM indukowaną STZ + BBR (200 | ↓ stężenia glukozy i insuliny na | |||||
mg/kg mc/d), 5 tygodni | czczo ↓ poposiłkowego stężenia glukozy | |||||
Szczury z DM indukowaną STZ + Akarboza | we krwi po doustnym podaniu | |||||
(40 mg/kg mc/2x/d), 5 tygodni (n=6) | sacharozy lub maltozy | |||||
Zdrowe szczury + placebo, 5 tygodni (n=6) | ||||||
Zdrowe szczury + BBR (100 mg/kg mc/d), 5 | ||||||
tygodni (n=6) | ||||||
Zdrowe szczury + BBR (200 mg/kg mc/d), 5 | ||||||
tygodni | ||||||
Zdrowe szczury + Akarboza (40 mg/kg | ||||||
mc/2x/d), 5 tygodni (n=6) | ||||||
Xue i wsp. | 2013 | Samce myszy db/db z DM | Grupa kontrolna: sól fizjologiczna (n=10) | 4 tygodnie | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [ |
BBR: 100 mg/kg mc/d (n=10) | ↓ HOMA-IR | |||||
↓ stężenia glukozy w IPGTT | ||||||
BBR-SLNs: 50 mg mc/kg mc/d (n=10) | ↓ stężenia insuliny w IPITT | |||||
BBR-SLNs :100 mg/kg mc/d (n=10) | ||||||
Zhang i wsp. | 2018 | Samce myszy db/db z DM | Grupa |
4 tygodnie | ↓ stężenia glukozy na czczo | [ |
↓ stężenia glukozy w OGTT | ||||||
↓ stężenia insuliny w IPITT | ||||||
BBR: 200 mg/kg mc/d rozp. w 0,5% r-r kar- | ||||||
boksymetylocelulozy sodowej (n=10) | ||||||
BBR: 200 mg/kg mc/d + OPCs: 60 mg/kg mc/d (n=10) | ||||||
MET: 150 mg/kg mc/d (n=10) | ||||||
Almani et al. | 2017 | Samce szczura Wistar | Grupa kontrolna- zdrowe szczury: 0,9% soli fizjologicznej (n=10) | 28 dni | ↓ stężenia glukozy i insuliny na czczo | [ |
Szczury z DM indukowaną STZ (n=15) | ↓ HbA1c | |||||
Szczury z DM – MET: 100 mg/kg mc/2x/d | ↓ HOMA-IR | |||||
(n=15) | ||||||
Szczury z DM- MET: 100 mg/kg/2x/d + BBR: | ||||||
50 mg/kg mc/2x/d (n=15) | ||||||
Szczury z DM- MET: 100 mg/kg/2x/d + BBR: | ||||||
100 mg/kg mc/2x/d (n=15) |