<abstract xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml"><p> A survey was carried out on 38 commercial and experimental stone fruit orchards located in major growing areas of stone fruit trees in Poland to determine the incidence of lesser known viruses and phytoplasmas. Leaf samples from 145 sweet cherry and 102 sour cherry trees were tested for Little cherry virus 1 (LChV-1), Little cherry virus 2 (LChV-2), Cherry green ring mottle virus (CGRMV), Cherry mottle leaf virus (CMLV), and Cherry necrotic rusty mottle virus (CNRMV) using RT-PCR. Sixty samples collected from peach and 20 apricot trees were also tested for CGRMV. Eleven out of 145 sweet cherry and three out of 102 sour cherry trees were infected by LChV-1. CGRMV was detected in 10 sweet cherry, four sour cherry, 14 peach and two apricot trees. No LChV-2, CMLV and CNRMV were detected in any of the tested trees. Phloem tissue from samples of shoots collected from 145 sweet cherry, 102 sour cherry, 128 peach, 37 apricot, five nectarine and 20 European as well as Japanese plum trees were tested for phytoplasmas. The nested PCR of the extracted DNA with universal and specific primer pairs showed the presence of phytoplasmas in six sweet cherry, three sour cherry, nine peach, four apricot, one nectarine and three Japanese plum trees. The RFLP patterns of 16S rDNA fragments after digestion with RsaI, MseI, AluI, and SspI endonucleases indicated that selected stone fruit trees were infected by two distinct phytoplasmas belonging to the apple proliferation group. The stone fruit trees infected by LChV-1, CGRMV and phytoplasmas were grown in orchards localised in all seven regions</p></abstract>

A survey was carried out on 38 commercial and experimental stone fruit orchards located in major growing areas of stone fruit trees in Poland to determine the incidence of lesser known viruses and phytoplasmas. Leaf samples from 145 sweet cherry and 102 sour cherry trees were tested for Little cherry virus 1 (LChV-1), Little cherry virus 2 (LChV-2), Cherry green ring mottle virus (CGRMV), Cherry mottle leaf virus (CMLV), and Cherry necrotic rusty mottle virus (CNRMV) using RT-PCR. Sixty samples collected from peach and 20 apricot trees were also tested for CGRMV. Eleven out of 145 sweet cherry and three out of 102 sour cherry trees were infected by LChV-1. CGRMV was detected in 10 sweet cherry, four sour cherry, 14 peach and two apricot trees. No LChV-2, CMLV and CNRMV were detected in any of the tested trees. Phloem tissue from samples of shoots collected from 145 sweet cherry, 102 sour cherry, 128 peach, 37 apricot, five nectarine and 20 European as well as Japanese plum trees were tested for phytoplasmas. The nested PCR of the extracted DNA with universal and specific primer pairs showed the presence of phytoplasmas in six sweet cherry, three sour cherry, nine peach, four apricot, one nectarine and three Japanese plum trees. The RFLP patterns of 16S rDNA fragments after digestion with RsaI, MseI, AluI, and SspI endonucleases indicated that selected stone fruit trees were infected by two distinct phytoplasmas belonging to the apple proliferation group. The stone fruit trees infected by LChV-1, CGRMV and phytoplasmas were grown in orchards localised in all seven regions

Occurrence and detection of lesser known viruses and phytoplasmas in stone fruit orchards in Poland

Research Institute of Pomology and Floriculture

Folia Horticulturae

This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 License.

<trans-abstract xml:lang="pl" xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml"><p> W 38 sadach drzew pestkowych zlokalizowanych w siedmiu różnych rejonach kraju dokonywano lustracji pod kątem występowania chorób wywoływanych przez mało znane w Polsce wirusy i fitoplazmy. Pobrano liście ze 145 drzew czereśni i 102 drzew wiśni do badań na obecność wirusów drobnienia owoców czereśni (LChV-1 i LChV- 2), wirusa zielonej pierścieniowej pstrości czereśni (CGRMV), wirusa cętkowanej plamistości liści czereśni (CMLV) i wirusa nekrotyczno-rdzawej plamistości czereśni (CNRMV) przy użyciu metody RT-PCR. Ponadto, testom na CGRMV poddano również 60 drzew brzoskwini i 20 drzew moreli. LChV-1 wykryto w jedenastu drzewach czereśni i trzech drzewach wiśni, zaś CGRMV w dziesięciu drzewach czereśni, czterech wiśni, czternastu brzoskwini i dwóch moreli. W żadnym z badanych drzew nie stwierdzono obecności LChV-2, CMLV i CNRMV. Stosując PCR z użyciem dwóch par starterów uniwersalnych oraz starterów specyficznych na kilka grup fitoplazm, przeprowadzono testy na obecność fitoplazm w 145 drzewach czereśni, 102 drzewach wiśni, 128 drzewach brzoskwini, 37 drzewach moreli, 20 drzewach śliwy i pięciu drzewach nektaryny. Wykazano, że spośród wszystkich badanych, drzewa sześciu czereśni, trzech wiśni, 9 brzoskwini, czterech moreli, trzy drzewa japońskiej śliwy i jedno drzewo nektaryny były porażone przez fitoplazmy. Analiza polimorfizmu długości fragmentów restrykcyjnych (RFLP) po trawieniu enzymami RsaI, MseI, AluI, SspI fragmentów 16S rDNA fitoplazm wykazała, że wybrane do badań drzewa były porażone przez dwie różne fitoplazmy zaliczane do grupy fitoplazmy proliferacji jabłoni </p></trans-abstract>

W 38 sadach drzew pestkowych zlokalizowanych w siedmiu różnych rejonach kraju dokonywano lustracji pod kątem występowania chorób wywoływanych przez mało znane w Polsce wirusy i fitoplazmy. Pobrano liście ze 145 drzew czereśni i 102 drzew wiśni do badań na obecność wirusów drobnienia owoców czereśni (LChV-1 i LChV- 2), wirusa zielonej pierścieniowej pstrości czereśni (CGRMV), wirusa cętkowanej plamistości liści czereśni (CMLV) i wirusa nekrotyczno-rdzawej plamistości czereśni (CNRMV) przy użyciu metody RT-PCR. Ponadto, testom na CGRMV poddano również 60 drzew brzoskwini i 20 drzew moreli. LChV-1 wykryto w jedenastu drzewach czereśni i trzech drzewach wiśni, zaś CGRMV w dziesięciu drzewach czereśni, czterech wiśni, czternastu brzoskwini i dwóch moreli. W żadnym z badanych drzew nie stwierdzono obecności LChV-2, CMLV i CNRMV. Stosując PCR z użyciem dwóch par starterów uniwersalnych oraz starterów specyficznych na kilka grup fitoplazm, przeprowadzono testy na obecność fitoplazm w 145 drzewach czereśni, 102 drzewach wiśni, 128 drzewach brzoskwini, 37 drzewach moreli, 20 drzewach śliwy i pięciu drzewach nektaryny. Wykazano, że spośród wszystkich badanych, drzewa sześciu czereśni, trzech wiśni, 9 brzoskwini, czterech moreli, trzy drzewa japońskiej śliwy i jedno drzewo nektaryny były porażone przez fitoplazmy. Analiza polimorfizmu długości fragmentów restrykcyjnych (RFLP) po trawieniu enzymami RsaI, MseI, AluI, SspI fragmentów 16S rDNA fitoplazm wykazała, że wybrane do badań drzewa były porażone przez dwie różne fitoplazmy zaliczane do grupy fitoplazmy proliferacji jabłoni

A survey was carried out on 38 commercial and experimental stone fruit orchards located in major growing areas of stone fruit trees in Poland to determine the...

Occurrence and detection of lesser known viruses and phytoplasmas in stone fruit orchards in Poland

Data publikacji: 01 sie 2013

Zakres stron: 51 - 57

DOI: https://doi.org/10.2478/fhort-2013-0159

Słowa kluczowe
CGRMV, CMLV, CNRMV, LChV-1, LChV-2, PCR/RFLP, phytoplasmas

© 2010 Mirosława Cieślińska et al., published by Versita

This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 License.

Occurrence and detection of lesser known viruses and phytoplasmas in stone fruit orchards in Poland

Data publikacji: 01 sie 2013

Zakres stron: 51 - 57

DOI: https://doi.org/10.2478/fhort-2013-0159

Słowa kluczoweCGRMV, CMLV, CNRMV, LChV-1, LChV-2, PCR/RFLP, phytoplasmas

© 2010 Mirosława Cieślińska et al., published by Versita

This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 License.

Słowa kluczowe
CGRMV, CMLV, CNRMV, LChV-1, LChV-2, PCR/RFLP, phytoplasmas