Accès libre

The Occurrence of Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus (MRSA) Around the World and Antibiotic Therapy for Selected Infections Caused By MRSA

À propos de cet article

Citez

Wprowadzenie

Staphylococcus aureus jest Gram-dodatnią bakterią, o kształcie kulistym i wielkości od 0,5–1,5 μm [Bitrus i wsp. 2018], nie wykazującą zdolności ruchu [Harris i wsp. 2002]. Jako fakultatywny beztlenowiec, uzyskuje energię z oddychania tlenowego lub na drodze fermentacji. Optymalna temperatura wzrostu dla tej bakterii mieści się w zakresie 18–40°C [Gnanamani i wsp. 2017]. Na podłożu agarowym, bogatym w składniki odżywcze, tworzy żółte lub białe kolonie wielkości od 1 do 4 mm, a podczas wzrostu na płytkach agarowych z krwią, kolonie często otoczone są strefą hemolizy [Bitrus i wsp. 2018; Gnanamani i wsp. 2017]. Żółte zabarwienie kolonii związane jest ze zdolnością niektórych szczepów S. aureus do wytwarzania stafyloksantyny – karotenoidowego pigmentu. Barwnik ten działa jako czynnik wirulencji, głównie jako bakteryjny przeciwutleniacz, pomagając komórkom bakteryjnym uniknąć reaktywnych form tlenu, które układ odpornościowy gospodarza wykorzystuje do zabijania patogenów [Thomer i wsp. 2016]. S. aureus toleruje wysokie stężenie chlorku sodu przynajmniej do 15% [Ochiai 1999].

Zakażenia wywołane przez ten drobnoustrój występują zarówno poza, jak i w środowisku szpitalnym [Truszczyński i wsp. 2013; Turner i wsp. 2019]. Infekcje mogą obejmować praktycznie wszystkie narządy i tkanki, stanowiąc zagrożenie życia [Turner i wsp. 2019]. Patogen, po wniknięciu do tkanek lub krwioobiegu, może wywoływać m.in. zapalenie płuc, kości i szpiku, wsierdzia, ucha środkowego, stanowi ponadto często przyczynę infekcji skórnych oraz może powodować zatrucia pokarmowe [Algammal i wsp. 2020; Garoy i wsp. 2019]. Niepokojący jest fakt szybkiego nabywania przez szczepy gronkowca złocistego oporności na antybiotyki, co powoduje, że leczenie zakażeń wywołanych tym patogenem stanowi poważne wyzwanie dla współczesnej medycyny i epidemiologii [Kobayashi i wsp. 2019]. S. aureus oporny na metycylinę (methicillin-resistant Staphylococcus aureus, MRSA) jest jednym z ważniejszych bakteryjnych patogenów [Dadashi i wsp. 2018; Turner i wsp. 2019]. Określany jest często mianem „superbakterii” [Loewen i wsp. 2017]. Szacuje się, że około 50–70% szczepów S. aureus izolowanych ze środowiska szpitalnego to szczepy MRSA. Rocznie powodują one blisko 100 000 przypadków zakażeń, z czego w samych Stanach Zjednoczonych około 20% kończy się zgonem [Abdolmaleki i wsp. 2019]. Szczepy MRSA i zakażenia wywołane tym patogenem stanowią poważny problem zdrowia publicznego [Zasowski i wsp. 2017]. W raporcie z 2014 roku Światowa Organizacja Zdrowia umieściła MRSA jako jeden z siedmiu patogenów o globalnym zasięgu powodującym schorzenia o wysokim wskaźniku śmiertelności [Hamzah i wsp. 2019]. Ponadto szczepy gronkowca złocistego opornego na metycylinę zaczęły przenikać do różnych środowisk, co dało początek populacjom: szpitalnych szczepów MRSA (healthcare-associated methicillin-resistant S. aureus, HA-MRSA), pozaszpitalnych szczepów MRSA (community-associated methicillin-resistant S. aureus, CA-MRSA) oraz odzwierzęcych szczepów MRSA (livestock-associated methicillin-resistant S. aureus, LA-MRSA) [Garoy i wsp. 2019; Lee i wsp. 2018; Bal i wsp. 2016; Kizerwetter-Świda i wsp. 2017].

Zakażenia o etiologii HA-MRSA odnotowuje się głównie u pacjentów po zabiegach chirurgicznych oraz z obniżoną odpornością [Garoy i wsp. 2019; Lee i wsp. 2018; Bal i wsp. 2016; Kizerwetter-Świda i wsp. 2017].

Szczepy CA-MRSA odpowiadają za zakażenia charakteryzujące się niejednokrotnie ciężkim przebiegiem, wynikającym z ich dużej zjadliwości. Mogą powodować infekcje tkanek miękkich, zaostrzenie objawów atopowego zapalenia skóry, martwicze zapalenie powięzi, martwicze zapalenie płuc, sepsę oraz syndrom szoku toksycznego. Czynnikami predysponującymi do zakażenia CA-MRSA są m.in. cukrzyca oraz długotrwała terapia antybiotykowa (powyżej 6 miesięcy) [Price i wsp. 2000]. W obrębie populacji CA-MRSA wyróżnia się m.in. klony: USA200, USA300 oraz USA400, a także ST80. Izolaty CA-MRSA USA300 i USA400 posiadają zdolność wytwarzania wysoce zapalnych cytolizyn: α-toksyny, γ-toksyny, δ-toksyny, w przeciwieństwie do szczepów USA200. Posiadają także zdolność wytwarzania leukocydyny Panton-Valentine (Panton Valentine Leukocidin, PVL). Ponadto USA300 zawiera gronkowcową kasetę chromosomalną mec (staphylococcal cassette chromosome mec, SCCmec) typ IV, co tłumaczy patogenny charakter tego szczepu [Schlievert i wsp. 2010].

Kolejną grupę stanowią szczepy LA-MRSA, które początkowo sporadycznie stwierdzano u zwierząt gospodarskich, jednak od 2005 r. drobnoustroje te coraz częściej opisywano u trzody chlewnej, a z czasem ich występowanie zaczęto odnotowywać u ludzi [Alen i wsp. 2016]. Odzwierzęce szczepy MRSA powodują najczęściej zakażenia układu oddechowego, tkanek miękkich oraz skóry [Van Cleef i wsp. 2011].

Jak wspomniano wcześniej, gronkowce posiadają zdolność do wytwarzania wielu czynników patogenności (w tym toksyn oraz enzymów). Wymieniona już leukocydyna PVL jest dwuskładnikową cytotoksyną, należącą do rodziny białek tworzących pory w błonach komórek docelowych. Zdolność do wytwarzania toksyny Panton-Valentine jest warunkowana występowaniem genów lukS-PV oraz lukF-PV, znajdujących się w obrębie profaga ϕSa2. Szczepy S. aureus wytwarzające PVL mogą powodować m.in. ostre martwicze zapalenia płuc, a także zmiany ropne i martwicze skóry oraz innych tkanek [Ma i wsp. 2012].

Kolejne ważne czynniki patogenności to: koagulaza wolna i związana (clumping factor, CF) powodujące wykrzepianie osocza; receptory wiążące macierz zewnątrzkomórkową (extracellular matrix, ECM), pełniące rolę w adhezji gronkowców do tkanek gospodarza; toksyny, do których należą m.in. cytolizyny gronkowcowe zaliczane do toksyn porotwórczych (pore-forming toxins, PFT) wytwarzane w postaci rozpuszczalnych w wodzie monomerów białkowych, konwertujących do form wbudowujących się w strukturę błon komórek docelowych; toksyny epidermolityczne (eksfoliatyna 1 i 2) powodujące uszkadzanie naskórka; enterotoksyny; toksyna pirogenna TSST-1 (toxic shock syndrome toxin-1), będąca najczęstszą przyczyną zespołu wstrząsu toksycznego. Dodatkowo ważną rolę w patogenności gronkowców odgrywają: fibrynolizyna (stafylokinaza), powodująca rozpuszczanie skrzepów krwi; powierzchniowe białko A, chroniące komórki gronkowca przed fagocytozą poprzez wiązanie się z fragmentem Fc immunoglobulin; hialuronidaza, ułatwiająca rozprzestrzenianie bakterii poprzez rozkładanie kwasu hialuronowego w tkance łącznej; DNazy; lipazy; proteazy; ureazy; stafyloferyny (siderofory) [Lopaciuk i wsp. 2012].

Wspomniane powyżej czynniki determinują zjadliwość szczepów S. aureus, powodując ciężkie do wyleczenia infekcje. Ponadto efektywny horyzontalny transfer genów S. aureus umożliwia ich doskonałe przystosowanie do warunków panujących w środowisku oraz nabywanie genów oporności na antybiotyki [Lindsay i wsp. 2010].

Pierwszym antybiotykiem, wykrytym w 1929 roku przez Aleksandra Fleminga, była penicylina. Antybiotyk ten istotnie zmienił rokowania u chorych z zakażeniami, przyczyniając się do zmniejszenia umieral-ności z powodu infekcji, jednak powszechne stosowanie penicylin było przyczyną pojawienia się szczepów S. aureus opornych na te leki. W 1959 roku do praktyki klinicznej wprowadzono nowy, półsyntetyczny antybiotyk β-laktamowy – metycylinę, ale po roku od jej zastosowania wyosobniono pierwsze szczepy metycylinooporne [Harkins i wsp. 2017]. Gen warunkujący oporność na metycylinę prawdopodobnie został nabyty znacznie wcześniej niż wprowadzono ten antybiotyk do leczenia, tj. w połowie lat czterdziestych ubiegłego wieku w okresie nadmiernego stosowania penicylin. Wskazuje to, iż w rzeczywistości szerokie stosowanie penicylin (a nie metycyliny), doprowadziło do selekcji szczepów MRSA [Harkins i wsp. 2017; Lee i wsp. 2018]. Oporność tych szczepów na większość antybiotyków β-laktamowych wynika z obecności w ścianie komórkowej białka wiążącego penicylinę 2a (penicillin-binding protein 2a, PBP2a), wykazującego niskie powinowactwo do β-laktamów [Andrade-Figueiredo i wsp. 2016; Foster i wsp. 2019; Gostev i wsp. 2017; Panchal i wsp. 2020; Turner i wsp. 2019]. Białko to jest kodowane przez gen mecA, zlokalizowany na chromosomie bakteryjnym i stanowi część regionu gronkowcowej kasety chromosomalnej SCCmec [Alkharsah i wsp. 2018; Andrade-Figueiredo i wsp. 2016; Foster i wsp. 2017; Gostev i wsp. 2017; Panchal i wsp. 2020; Turner i wsp. 2019]. Oporność na metycylinę może być również warunkowana obecnością genu mecC, będą-cego homologiem genu mecA [Ciesielczuk i wsp. 2019]. U S. aureus opisano także występowanie plazmidowego genu mecB, którego obecność pierwotnie odnotowano u Macrococcus caseolyticus [Becker i wsp. 2018]. Wskazuje to na możliwość transferu kodowanej przez mecB oporności na β-laktamy pomiędzy różnymi rodzajami bakterii [Schwendener i wsp. 2017]. Gronkowiec złocisty oporny na metycylinę jest dodatkowo niewrażliwy m.in. na tetracykliny, często także na aminoglikozydy, fluorochinolony i chloramfenikole, makrolidy, linkozamidy, ciproflokascynę [Kot i wsp. 2020]. Na przełomie ostatnich lat opracowano zaledwie kilka antybiotyków aktywnych wobec szczepów MRSA, m.in.: ceftobiprol, ceftarolinę, orytawancynę, dalbawancynę oraz delafloksacynę, daptomycynę, linezolid, tygecyklinę, co powoduje, że infekcje o tej etiologii cechują się wysokim wskaźnikiem śmiertelności [Turner i wsp. 2019; Lee i wsp. 2018; Giulieri i wsp. 2020].

Kolonizacja różnych części ciała człowieka przez S. aureus

Gronkowiec złocisty zaliczany jest do organizmów oportunistycznych, które w sprzyjających warunkach wywołują zakażenie. Wrotami umożliwiającymi zainfekowanie organizmu mogą być pęknięte naczynia krwionośne lub uszkodzona skóra [Polgreen i wsp. 2004]. Kolonizacja ciała szczepami S. aureus występuje u ludzi w każdym wieku. Badania przeprowadzone na oddziałach noworodkowych wskazują najczęstsze nosicielstwo S. aureus (80–100%) u noworodków około 10 doby życia. Około 1–2 roku życia odsetek ten zmniejsza się do 20%.

Nosicielstwo S. aureus może mieć charakter stały (10–20% populacji) albo okresowy (20–70% populacji) [Weems i wsp. 2002]. Znaczna większość dzieci jest nosicielami stałymi, natomiast dorośli wykazują tendencję przemijającą. Modyfikacja nosicielstwa stałego w okresowe zachodzi między 10 a 20 rokiem życia [El-Jakee i wsp. 2008]. Okres nosicielstwa S. aureus zależy od wieku chorego, występowania towarzyszącej choroby przewlekłej, tj. niewydolności nerek, defektów układu immunologicznego, uwarunkowań genetycznych oraz długości czasu hospitalizacji pacjenta [Karyński i wsp. 2012].

Stwierdza się, że pacjenci z łagodnymi infekcjami skóry cechują się wyższą częstością kolonizacji S. aureus w porównaniu do osób z nieprzerwaną ciągłością skóry [Polgreen i wsp. 2004]. Osoby będące nosicielami S. aureus mogą być źródłem zakażenia u osób nieskolonizowanych, zwłaszcza dzieci i osób starszych [Hatcher i wsp. 2016]. Najczęstszym miejscem kolonizacji szczepami gronkowca złocistego jest przedsionek nosa [Hassoun i wsp. 2017]. Nosicielstwo w nozdrzach przednich występuje u około 25–30% zdrowej populacji [Mertz i wsp. 2007; Lu i wsp. 2018]. Kolonizacja pozostałych miejsc ciała szczepami S. aureus może dotyczyć odbytnicy, krocza, pachwin oraz gardła. Tym samym pobieranie wymazów wyłącznie z nosa może być niewystarczające do oceny nosicielstwa [Hassoun i wsp. 2017] (czułość takiego badania oscyluje w granicach 66%) [Turner i wsp. 2019]. Pobieranie próbek z więcej, niż jednego miejsca ciała skutkuje wyższymi wskaźnikami wykrywalności kolonizacji szczepem MRSA w testach przesiewowych opartych na technice PCR [Hombach i wsp. 2010].

Badania wskazują, że pacjenci z egzemą są bardziej narażeni na kolonizację S. aureus niż osoby zdrowe [Totté i wsp. 2016]. Około 90% powierzchni skóry u pacjentów z atopowym zapaleniem skóry jest skolonizowanych przez S. aureus [Hepburn i wsp. 2016]. Kolonizacja skóry szczepami MRSA u osób z atopowym zapaleniem skóry zmienia skład mikrobioty, zarówno u dzieci, jak i dorosłych, prowadząc do zmniejszenia liczby bakterii komensalnych, występujących na skórze [Shi i wsp. 2018]. Ponadto kolonizacja organizmu szcze-pami MRSA może przyczyniać się do czterokrotnego zwiększenia ryzyka infekcji w porównaniu do ryzyka zakażeń szczepami metycylinowrażliwymi (methicillin-sensitive S. aureus, MSSA) [Safdar i wsp. 2008]. Nosicielstwo MRSA wynosi 0,2% u osób, które nie miały wcześniejszego kontaktu ze środowiskiem szpitalnym, natomiast wśród pozostałych osób, w tym personelu medycznego, jest ono wyższe i wynosi od 3% do 40% w zależności od regionu świata [Neradova i wsp. 2020; Deepashree i wsp. 2021]. Do transmisji MRSA w szpitalach dochodzi głównie przez ręce personelu medycznego [Solberg i wsp. 2000].

U kobiet czynnikami zwiększającymi ryzyko kolonizacji MRSA są wiek powyżej 60 lat, życie w ubóstwie oraz cukrzyca. U mężczyzn zasadniczym czynnikiem jest kontakt ze środowiskiem szpitalnym [Hassoun i wsp. 2017]. Do osób narażonych na zwiększone ryzyko kolonizacji należą ponadto sportowcy, osoby przebywające w zakładach karnych, dzieci, właściciele zwierząt oraz osoby mające częsty kontakt z placówkami służby zdrowia [Turner i wsp. 2019]. Na oddziałach neonatologii i intensywnej terapii noworodka głównymi czynnikami związanymi z kolonizacją MRSA u noworodków są m.in. niższa masa urodzeniowa oraz wcześniactwo [Nelson i wsp. 2012]. Częstość występowania kolonizacji nosa MRSA w tej grupie wynosi od 2% do 4% [Zervou i wsp. 2014].

Rezerwuarem gronkowca złocistego, w tym izolatów metycylinoopornych, może być, oprócz wymienionych wcześniej obszarów ciała, także jama ustna osób dorosłych z objawami infekcji w jej obrębie. W jamie ustnej częstość występowania MRSA wynosi do kilkunastu procent, co uzasadnia potrzebę diagnostyki mikrobiologicznej i monitorowania kolonizacji S. aureus w stomatologii [Kwapisz i wsp. 2017].

Występowanie MRSA na kontynencie europejskim

Zakażenia szczepami MRSA dotykają ponad 150 000 pacjentów rocznie w całej Unii Europejskiej [Garoy i wsp. 2019; Kot i wsp. 2020; Piechota i wsp. 2018]. W 2018 roku średni odsetek szczepów MRSA wynosił 16,4% [Ziółkowski i wsp. 2020]. Występowanie infekcji powodowanych przez MRSA wykazuje pewną zależność geograficzną i jest niższe w Europie Północnej, natomiast wyższe w Europie Południowo-Wschodniej i Południowej [Pomorska-Wesołowska i wsp. 2017]. W 2020 r. dziewięć (23%) z 40 krajów europejskich zgłaszało odsetek występowania szcze-pów MRSA poniżej 5%, były to: Austria, Dania, Finlandia, Estonia, Holandia, Luksemburg, Norwegia, Szwajcaria i Szwecja. Natomiast odsetek równy lub większy niż 25% odnotowano w 10 (25%) krajach europejskich, takich jak: Białoruś, Cypr, Chorwacja, Grecja, Włochy, Macedonia Północna, Portugalia, Rumunia, Turcja i Serbia [World Health Organization: Antimicrobial 26.01.2022].

Na kontynencie europejskim większość szpitalnych zakażeń MRSA powodowana jest przez szczepy HA-MRSA, natomiast duży rezerwuar szczepów LA-MRSA (głównie klonu ST398), stanowią zwierzęta hodowlane (świnie, drób, bydło, konie) [Hetem i wsp. 2016]. Szczepy LA-MRSA mogą być przenoszone na ludzi poprzez bezpośredni kontakt ze zwierzętami hodowlanymi, co dowodzi, że posiadają zdolność przełamywania bariery gatunkowej, ale udokumentowano również przypadki występowania szczepów LA-MRSA u osób, które nie miały wcześniejszego kontaktu z żywym inwentarzem [Lee i wsp. 2018; Van Alen i wsp. 2016]. Kolonizacja szczepami LA-MRSA wśród ludzi bywa na ogół bezobjawowa i przemijająca [Sharma i wsp. 2016]. Natomiast dominującą linię szczepów CA-MRSA w Europie stanowi klon ST80, który prawdopodobnie wywodzi się od szczepów gronkowca złocistego wrażliwego na metycylinę wytwarzającego toksynę PVL, a pochodzącego z regionów Afryki Subsaharyjskiej [Figueiredo i wsp. 2017; KizerwetterŚwida i wsp. 2017].

W 2018 roku średni odsetek występowania szczepów MRSA w Polsce wynosił 15,8% [Ziółkowski i wsp. 2020]. W badaniach przeprowadzonych w Szpitalu Uniwersyteckim nr 2 w Bydgoszczy w latach 2015–2017 + rozpoznano 8/212 (3,77%) przypadków zakażeń szpitalnych o etiologii MRSA w 2015 roku, 14/272 (5,14%) zakażeń w 2016 roku i 5/268 (1,86%) przypadków zakażeń w 2017 roku [Kuziemski i wsp. 2018]. Zakażenia szpitalne o etiologii MRSA w szpitalach w południowej Polsce występowały częściej na oddziałach intensywnej opieki medycznej (36,8%) niż na oddziałach innych niż OIOM. Ponadto częstość występowania MRSA różniła się w zależności od wieku pacjentów i wynosiła 14,1% u pacjentów w wieku 60-74 lat oraz 19,5% u pacjentów powyżej 75 roku życia [Pomorska-Wesołowska i wsp. 2017].

Występowanie MRSA na kontynencie amerykańskim

W Stanach Zjednoczonych zakażenia wywołane szczepami MRSA powodują rocznie większą liczbę zgonów niż jakikolwiek inny czynnik etiologiczny [Alkharsah i wsp. 2018]. Według danych amerykań-skiego Centrum Zwalczania i Zapobiegania Chorobom (Centers for Disease Control and Prevention, CDC) w 2019 roku MRSA był odpowiedzialny za 119 000 infekcji i 20 000 zgonów w USA [Kourtis i wsp. 2019]. W szpitalnych oddziałach ratunkowych drobnoustrój ten stanowi najczęstszą przyczynę zakażeń skóry i tka-nek miękkich (Skin and Soft Tissue Infections, SSTIs). Sytuacja ta związana jest w dużej mierze z pojawieniem się w 2000 roku szczepu CA-MRSA, w szczególności klonu USA300 [Lee i wsp. 2018]. Klon ten jest dominującym w Stanach Zjednoczonych w zakażeniach o etiologii CA-MRSA [Figueiredo i wsp. 2017].

Występowanie MRSA w krajach Azji i Pacyfiku

Azja stanowi jeden z obszarów o największej częstości występowania MRSA na świecie. Od 1980 roku obserwuje się tu ciągły wzrost częstości izolacji tych szczepów w placówkach opieki zdrowotnej [Junie i wsp. 2018]. W Arabii Saudyjskiej nosicielstwo MRSA wśród pracowników służby zdrowia jest szeroko rozpowszechnione i wynosi 76% [Iyer i wsp. 2014]. Na Bliskim Wschodzie oporność na metycylinę wykazuje około 70% szpitalnych izolatów S. aureus, a ponad 85% przypadków zapalenia płuc na Półwyspie Arabskim wywołanych jest szczepami MRSA [Zigmond i wsp. 2014].

W prowincji Yunnan, w Chinach, 60% zakażeń o etiologii S. aureus jest spowodowane przez szczepy metycylinooporne, a główną przyczyną zakażeń szpitalnych są klony ST239 i ST59 [Liao i wsp. 2020]. Podobny odestek odnotowuje się w Korei Południowej [Song i wsp. 2013]. W 2017 roku w Szanghaju wskaźnik izolacji MRSA wynosił około 49% [Hu i wsp. 2018], natomiast w Nepalu, według najnowszych badań, drobnoustroje te odpowiadają za ponad jedną trzecią wszystkich zakażeń o etiologii S. aureus [Khanal i wsp. 2021]. Również w Indiach, według badań przeprowadzonych w 2017 roku przez Indyjską Radę Badań Medycznych (Indian Council of Medical Research, ICMR), częstość występowania MRSA wynosiła ponad 37%. W krajach Rady Współpracy Zatoki Perskiej w latach 2005–2019 wskaźnik zakażeń spowodowanych szczepami metycylinoopornymi wahał się od 9% do 38% [Tabaja i wsp. 2021]. Natomiast spadek zakażeń o tej etiologii obserwuje się w Japonii i na Tajwanie, dzięki wdrożeniu m.in. odpowiednich praktyk kontroli zakażeń MRSA [Sit i wsp. 2017].

Występowanie MRSA na kontynencie afrykańskim

W krajach afrykańskich, takich jak Nigeria, Senegal, Etiopia, Republika Południowej Afryki, Kenia oraz Sudan Południowy, pojawienie się szczepów MRSA zaobserwowano w połowie lat 80-tych ubiegłego wieku [Iliya i wsp. 2020]. Badania przeprowadzone w latach 2014–2020 pokazują, że głównymi klonami występującymi w Afryce są: CC5, CC8 i CC88 [Lawal i wsp. 2022]. W szpitalach Afryki Subsaharyjskiej MRSA stanowi główny czynnik zakażeń noworodków [Okomo i wsp. 2019]. W Kenii częstość izolacji MRSA jest zróżnicowana i wynosi od 1% do 84,1%, w zależności od lokalizacji miejsca infekcji [Nyasinga i wsp. 2022].

Leczenie zakażeń wywołanych szczepami MRSA
Bakteriemie i zapalenie wsierdzia

Częstość występowania bakteriemii spowodowanej szczepami MRSA uległa zmniejszeniu w ciągu ostatniej dekady. Mimo tego, nadal wiąże się ona z gorszymi rokowaniami w porównaniu z infekcjami wywoływanymi szczepami MSSA.

Lekiem pierwszego rzutu w leczeniu bakteriemii MRSA jest wankomycyna [Hassoun i wsp. 2017], jednak od 1997 roku izoluje się szczepy o zmniejszonej wrażliwości na wankomycynę (vancomycin intermediate Staphylococcus aureus, VISA), a od roku 2002 także szczepy oporne na wankomycynę (vancomycin resistant Staphylococcus aureus, VRSA) [Giulieri i wsp. 2020]. Badania prowadzone na szczepach VISA wykazały obecność zmian w strukturze ich ściany komórkowej. Składająca się z peptydoglikanu ściana u tych szczepów jest grubsza, niż u szczepów wrażliwych na wankomycynę, co utrudnia wnikanie antybiotyku do komórki [Sadowy i wsp. 2021]. Zasadniczą rolę w powstawaniu zmodyfikowanej ściany komórkowej pełnią mutacje w regionie walKR (znanym również jako vicKR, micAB, yycGF), biorącym udział w kontrolowaniu procesu syntezy ściany komórkowej [Howden i wsp. 2011]. Natomiast szczepy VRSA niosą kopie transpozonu Tn1546, nabytego od opornych na wankomycynę szczepów Enterococcus faecalis. Transpozon posiadający geny kodujące oporność typu VanA, koduje dehydrogenazę (VanH), redukującą pirogronian do D-Lac i ligazę VanA, katalizującą powstawanie wiązania estrowego pomiędzy D-Ala i D-Lac. W wyniku tego dipeptyd D-Ala-D-Ala jest zastępowany przez depsypeptyd D-Ala-D-Lac, co zmniejsza powinowactwo dla wankomycyny [Depardieu i wsp. 2007].

Leczenie wankomycyną może przysparzać wiele trudności i wiąże się z ryzykiem rozwoju neurotoksyczności [Hassoun i wsp. 2017, Neely i wsp. 2014]. Dodatkowo, czynnikami ograniczającymi efektywność leczenia wankomycyną są: słaba penetracja do tkanek i powolna aktywność bakteriobójcza [Hassoun i wsp. 2017].

Oprócz wankomycyny, w leczeniu bakteriemii o etiologii MRSA oraz prawostronnego zapalenia wsierdzia, stosuje się daptomycynę. Daptomycyna zakłóca funkcjonowanie błony komórkowej, poprzez m.in. wiązanie się z nią, co powoduje jej szybką depolaryzację. Dodatkowo hamuje syntezę DNA, RNA i białek, co ostatecznie prowadzi do śmierci komórki [Heidary i wsp. 2018]. Daptomycyna nie powinna być jednak używana w leczeniu bakteriemii wtórnej, której towarzyszy zapalenie płuc, gdyż jest ona inaktywowana przez surfaktant płucny. Ponadto wcześniejsze leczenie wankomycyną może sprzyjać powstawaniu oporności na daptomycynę u S. aureus [Hassoun i wsp. 2017]. Stwierdzono, że oporność na daptomycynę regulują mutacje w genie mprF [Ernst i wsp. 2019]. Leczenie bakteriemii wankomycyną lub daptomycyną u około 30–50% pacjentów kończy się niepowodzeniem [Mikkaichi i wsp. 2019].

Kolejnym antybiotykiem stosowanym w leczeniu bakteriemii o etiologii MRSA jest teikoplanina [Holland i wsp. 2014; Yoon i wsp. 2014]. Związek ten jest dużą molekułą, hamującą syntezę ściany komórkowej bakterii, poprzez tworzenie wiązań wodorowych z D-alanylo-D-alaniną [Schmitz i wsp. 1997].

Najnowsze badania in vitro, przeprowadzone na modelu zwierzęcym, dały pozytywne efekty w leczeniu zapalenia wsierdzia o etiologii MRSA poprzez zastosowanie skojarzonej terapii z użyciem daptomycyny i fosfomycyny [García-de-la-Mària i wsp. 2018]. Fosfomycyna jest pochodną kwasu fosfonowego, o szerokim spektrum działania, nie wykazującą oporności krzyżowej z innymi antybiotykami, co więcej wykazuje aktywność wobec większości szczepów MRSA [Dadej i wsp. 2009; Shaw i wsp. 2015].

Kolejnym antybiotykiem, dającym nadzieję na efektywne leczenie bakteriemii, jest ceftarolina stosowana w monoterapii lub w połączeniu z innym antybiotykiem przeciwgronkowcowym [Hassoun i wsp. 2017]. Cefalosporyny, do której należy ceftarolina, hamują syntezę ściany komórkowej bakterii, w szczególności peptydoglikanu. Ceftarolina jest nową cefalosporyną o szerokim spektrum działania obejmującym szczepy MRSA, ze względu na silne powinowactwo do białek PBP, w tym PBP2a. Antybiotyk ten hamuje syntezę ściany komórkowej bakterii, w szczególności peptydo-glikanu. Leczenie ceftaroliną daje pozytywne efekty u blisko 70% pacjentów [Auer i wsp. 2017; Villegas-Estrada i wsp. 2008].

Dobre efekty w leczeniu bakteriemii uzyskuje się także w przypadku stosowania linezolidu, który jest antybiotykiem oksazolidynonowym [Hassoun i wsp. 2017]. Linezolid uniemożliwia biosyntezę białek poprzez hamowanie powstawania kompleksu inicjatorowego translacji w rybosomach bakteryjnych [Foster i wsp. 2017]. Ponadto, hamuje ekspresję niektórych czynników wirulencji (koagulazy i α-hemolizyny) wytwarzanych przez S. aureus [Mądry i wsp. 2004]. Najnowsze dane wskazują, że grupą antybiotyków bakteriostatycznych w leczeniu bakteriemii o etiologii MRSA mogą być linkozamidy, szczególnie u młodych pacjentów, w stanie stabilnym [Guthridge i wsp. 2021].

Zapalenie płuc

Opcje terapeutyczne dostępne w leczeniu zapalenia płuc o etiologii MRSA są dość ograniczone. Zgodnie z wytycznymi Amerykańskiego Towarzystwa Chorób Zakaźnych (Infectious Diseases Society of America, IDSA) z 2011 roku [Liu i wsp. 2011a, 2011b] w przy-padku zapalenia płuc wywołanego przez HA-MRSA, antyPREbiotykami pierwszego rzutu są: dożylnie podawana wankomycyna, doustnie lub dożylnie podawany linezolid oraz klindamycyna [Eliakim-Raz i wsp. 2017]. Linezolid wykazuje dobrą penetrację do tkanek. Ponadto terapia linezolidem może zmniejszać ryzyko zgonu pacjenta, w porównaniu do terapii wankomycyną [Wilke i wsp. 2017]. Stosowanie linezolidu jest jednak ograniczone możliwymi interakcjami lekowymi oraz działaniami niepożądanymi wynikającymi z długotrwałej terapii, takimi jak m.in. mielosupresja, neuropatia, podwyższenie stężenia enzymów wątrobowych, leukopenia, pancytopenia, trombocytopenia. Ponadto, po wprowadzeniu antybiotyku do lecznictwa, zaobserwowano obniżenie wrażliwości szczepów S. aureus na linezolid, a także pojawiły się doniesienia o wyizolowaniu szczepów MRSA opornych na ten lek [Michalska i wsp. 2006; Shaw i wsp. 2011].

W leczeniu zapalenia płuc o etiologii MRSA stosuje się także trimetoprim w połączeniu z sulfametoksazolem. Sulfametaksazol należący do grupy sulfonamidów, stanowi antybiotyk o szerokim spektrum działania, wykazujący działanie bakteriostatyczne. Trimetoprim również wykazuje silne działanie bakteriostatyczne i wzmacnia aktywność sulfametaksazoulu poprzez zahamowanie przekształcania kwasu dihydrofoliowego w tetrahydrofoliowy [Eliakim-Raz i wsp. 2017].

Nową opcję terapeutyczną w leczeniu szpitalnego zapalenia płuc oraz respiratorowego zapalenia płuc stanowi telawancyna, należąca do grupy bakteriobójczych lipopeptydów, hamująca syntezę ściany komórkowej bakterii. Jednak jej stosowanie powinno być ograniczone i zalecane wyłącznie w przypadku wyczerpania dostępnych skutecznych metod leczenia [Rodvold i wsp. 2014].

Zapalenie szpiku

MRSA jest przyczyną zapalenia szpiku w 10–59% przypadków tego typu zakażeń o etiologii S. aureus [Jerzy i wsp. 2018]. Wytwarzanie biofilmu przez gronkowca złocistego komplikuje leczenie infekcji kości [Turner i wsp. 2019]. Komórki bakteryjne będące w strukturze biofilmu wykazują od 10 do 1000 razy większą oporność na środki przeciwdrobnoustrojowe, niż komórki planktonowe [Zhang i wsp. 2021].

Leczenie przewlekłego zapalenia szpiku kostnego polega na chirurgicznym oczyszczeniu kości martwiczej w połączeniu z długotrwałą antybiotykoterapią [Zhang i wsp. 2021]. Antybiotykiem pierwszego rzutu jest wankomycyna, mimo dość słabej efektywności leczenia, wynikającej z niskiej penetracji do kości [Turner i wsp. 2019]. Bardzo dobrą penetrację do kości wykazuje natomiast linezolid, ze skutkami ubocznymi wspomnianymi powyżej [Turner i wsp. 2019]. Oprócz wymienionych antybiotyków w leczeniu zapalenia kości i szpiku o etiologii MRSA wykorzystuje się daptomycynę. Ponadto, najnowsze badania, opierające się na modelu zwierzęcym wykazały, że dalbawacyna jest skutecznym antybiotykiem w leczeniu zakażenia kości piszczelowej o etiologii MRSA u szczura [Silva i wsp. 2020]. Wykazuje ona również aktywność wobec szczepów VISA [Juul i wsp. 2016]. Kolejnym antybiotykiem, dającym nadzieje na pomyślne leczenie zapalenia szpiku jest, działająca bakteriobójczo, ceftarolina. Należy jednak pamiętać, że jej stosowanie może wywoływać wiele reakcji nieporządanych [Lalikian i wsp. 2017].

Zakażenia skóry i tkanek miękkich

Powikłane zakażenia skóry i tkanek miękkich (complicated Skin and Soft Ttissue Infections, cSSTI) stanowią ciężką postać infekcji, obejmującej głębsze tkanki miękkie. Skutecznym antybiotykiem w jej leczeniu jest wankomycyna, której efektywność porównywalna jest do antybiotyków nowszej generacji (linezolid, tygecyklina, daptomycyna, dalbawancyna, oritawancyna), jednakże słaba penetracja do głębszych tkanek powoduje obniżenie skuteczności leczenia ciężkich przypadków cSSTI. Linezolid stanowi nowszą alternatywę dla glikopeptydowych środków przeciwdrobnoustrojowych, zatwierdzoną do stosowania w przypadku ciężkich cSSTI o etiologii MRSA [Leong i wsp. 2018]. Innymi skutecznymi antybiotykami są ceftarolina, dalbawancyna i oritawancyna [Tirupathi i wsp. 2019]. Leczenie może obejmować jedną lub dwie dawki wymienionych antybiotyków [Agarwal i wsp. 2018]. Omadacyklina, należąca do nowej generacji tetracyklin, również wykazuje aktywność przeciwko szczepom MRSA i może być stosowana w leczeniu SSTI [Tirupathi i wsp. 2019].

Nowymi antybiotykami, przeciwko bakteriom Gram-dodatnim, w tym szczepom gronkowca złocistego opornego na metycylinę, są malacydyny. Obecnie prowadzi się wiele badań w kierunku zastosowania tych związ-ków w terapii. Antybiotyki te, wykryte w próbkach gleby i przetestowane in vivo na zwierzętach z zakaże-niami skóry, skutecznie hamowały dalszy rozwój infekcji o etiologii MRSA [Hover i wsp. 2018].

Podsumowanie

Penicylina, pierwszy odkryty antybiotyk, zasadniczo zmieniła rokowania u chorych z zakażeniami i przyczyniła się do zmniejszenia umieralności z powodu infekcji bakteryjnych, jednak pojawienie się szczepów opornych na różne grupy antybiotyków, w tym szczepów MRSA, i dynamiczne ich rozprzestrzenianie na świecie, ograniczyło możliwości terapeutyczne.

Problem bakterii antybiotykoopornych dotyka zarówno państw wysoko rozwiniętych, jak i krajów o niskich dochodach. Przewiduje się, że do 2050 roku, przy braku rozwoju nowych terapii, śmiertelność powodowana nieuleczalnymi infekcjami, wywołanymi przez antybiotykooporne bakterie, w tym MRSA, może wzrosnąć ponad dziesięciokrotnie [van Hal i wsp.]. W 2017 roku eksperci Światowej Organizacji Zdrowia (World Health Organization, WHO) uznali MRSA za jeden z ważniejszych organizmów wieloantybiotykoopornych i tym samym podkreślili potrzebę zwiększenia wysiłków w zakresie poszukiwań i badań nowych antybiotyków, a także innowacyjnych metod profilaktycznych, skierowanych przeciwko tym drobnoustrojom. Populacje szczepów MRSA nieustannie ulegają dynamicznym zmianom, co prawdopodobnie wynika z presji selekcyjnej antybiotyków, jak również z przenoszenia klonów epidemicznych między różnymi środowiskami. Dlatego zapobieganie rozprzestrzenianiu się szczepów MRSA oraz zwalczanie zakażeń o tej etiologii wymaga wielokierunkowych działań.

eISSN:
2545-3149
Langues:
Anglais, Polaco
Périodicité:
4 fois par an
Sujets de la revue:
Life Sciences, Microbiology and Virology